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树突状细胞介导肿瘤免疫治疗.doc

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    • 树突状细胞介导肿瘤免疫治疗【摘要】树突状细胞(DC)与肿瘤的发生发展有一定 的关系,在这个方面最引人注目的研究工作是应用抗原或抗 原多肽在体外冲击致敏DC,然后将之回输或免疫接种至荷瘤 宿主,进行免疫治疗随着DC对肿瘤抗原处理、递呈及识 别的分子基础以及DC作用机制的进一步阐明,推动了以DC 为基础的肿瘤免疫治疗的发展DC抗肿瘤疫苗具有很好的临 床应用前景关键词】树突状细胞;肿瘤免疫治疗树突状细胞(Dendritic cells, DC)是目前发现的功能 最强大的抗原提呈细胞,它能激活初始型T细胞,激发初始 免疫应答,在体内发挥强大的免疫监视功能DC与肿瘤的发 生发展有一定的关系,不同的肿瘤免疫存在肿瘤相关抗原, 若肿瘤患者体内DC功能缺陷,不能有效递呈肿瘤抗原,则导 致免疫无能或免疫耐受,使肿瘤得以发生发展[1]在这个 方面最引人注目的研究工作是应用抗原或抗原多肽在体外 冲击致敏DC,然后将之回输或免疫接种至荷瘤宿主进行免疫 治疗DC疫苗在众多的动物肿瘤模型的治疗中取得了显著的 效果,应用此方法对DC进行肿瘤抗原修饰可以解决因DC功 能缺陷造成的肿瘤免疫逃逸,而使用何种肿瘤抗原及如何将 肿瘤抗原在体外与DC结合,则成了应用DC瘤苗进行免疫治 疗的关键。

      1临床用DC的来源及诱导分化方法DC在体内外分布广泛,普遍存在于除脑组织外的各种 组织中,但其数量极少,在血液中仅占单核细胞总数的 0.5%~1.0%,在淋巴器官中虽然数量较多,但难以收集,而 且由于分离出的DC具有异质性,难以满足对DC的基础研究 及临床应用需要因此,必须进行DC体外培养,诱导分化 获取大量的DC以满足对DC临床治疗的需要目前体外获取 人DC的常用方法包括:(1)以外周血直接分离获得DC; (2) 来源于外周血、脐血或骨髓的CD34+细胞体外+GM GCF和 TNF a的培养条件下获取DC; C kit配体可提高DC的产 量,肝细胞生长因子(HGF)和PMA也是有效的DC分化扩增 激活因子[2] ; (3)单核细胞诱导分化扩增Garderet等[3] 总结了外周血单核细胞体外诱导扩增DC的基本过程,包括 用白细胞提取法收集外周血单核细胞,淘选法分离单核细 胞,人血清培养液(含患者自体血清或AB血清)或无血清 培养液加GM GSF加IL 4与单核细胞共同培养另一种方 法就是从脐血单核细胞诱导扩增DC,培养条件与外周血单核 细胞诱导DC相同来源于外周血的CD 14+单核细胞DC与来 源于CD34+细胞的DC在形态、表型、抗原提呈方面基本相似。

      但前者与后者相比更多的处于成熟阶段,在激活肿瘤特异性 的CTL能力上,后者可能更强一些到目前为止,大多数研 究应用单核细胞起源的DC (MoDC),在体外使大量的单核细 胞分化为DC,虽然需要外源性细胞因子刺激和较长的培养时 间,但是因其具有产量大、纯度高、易获得等优点,能满足 实验和临床研究的需要2负载DC常用的方法2. 1肿瘤特异抗原修饰的DC由于使用已知的肿瘤抗原多肽,可以避免不必要的免 疫刺激用前列腺特异性膜抗原致敏的DC治疗对激素治疗 不再有效的前列腺癌患者,以NPCP标准评估,30%的病人产 生了部分免疫应答血清前列腺特异性抗原和以前可测知的 损害下降了 50%,并且无副作用产生2.2肿瘤相关抗原(TAA)修饰的DC这些 TAA 包括 MAGE 1, MAGE 3,MUCI,Her 2/neu, CEA, Melan/MART等晚期前列腺癌,恶性黑色素瘤及表达 CEA的实体肿瘤患者采用相应抗原刺激DC,均取得了较好的 效果2. 3肿瘤特异性表位肽修饰的DC采用特异性表位肽由于其纯度较高,浓度较大,可 以激发较强的免疫反应,且抗原单纯,无诱发自身免疫反应 之忧,但不利之处在于其受MHC的限制,绝大多数肿瘤的特 异性抗原表位仍是未知的。

      因此,这种方法仅见在B细胞 淋巴瘤、多发性骨髓瘤及黑色素瘤等肿瘤抗原表位肽比较明 确的患者中使用第1期树突状细胞介导的肿瘤免疫治疗 吴 志刚2. 4全肿瘤抗原修饰的DC由于只有一部分肿瘤的肿瘤相关抗原或肿瘤特异性 抗原已知,大部分肿瘤尚未明确,无需明确肿瘤抗原,因而 将整个肿瘤细胞作为抗原来源,诸如将DC与肿瘤裂解物或 提取物、凋亡或坏死的细胞共培养,或将DC与肿瘤细胞融 合将肿瘤细胞与DC融合,可以获得既具有DC特殊功能又 表达肿瘤抗原的杂合体,这种杂合体细胞表达MHC I, MHC II抗原,协同刺激分子以及DC特异性或肿瘤细胞表面 分子输注以后可以产生抗瘤作用自体肿瘤细胞与抗原提呈 细胞融合制备的杂交细胞,在体内外均可以激发CD4+和 CD8+T淋巴细胞介导的免疫反应此方法应用困难,因为难 于获得高纯度并处于增殖状态的肿瘤细胞2.5肿瘤抗原基因转染构建DC采用转基因手段以某些功能修饰DC,使其在DC中表 达,激发特异性抗肿瘤免疫反应将编码肿瘤抗原的DNA和 RNA分子转入DC,可提供较大范围的抗原表位递呈,并且增 加了 MHC I和MHC II分子递呈抗原肽的能力,HLA限制性 的抗原选择也可被避免,而且肿瘤抗原编码基因导入DC后 能在DC内持续表达肿瘤抗原,可以克服由于DC上抗原MHC 复合物解离或细胞MHC分子降解对其诱导T细胞免疫应答产 生的不利影响。

      用差异筛选等方法获得肿瘤细胞特异性表达 的肿瘤mRNA,再用于刺激DC,同时也可将差异筛选获得的 肿瘤特异性表达mRNA的导入DC,用于肿瘤的免疫治疗,这 样可以避免自身抗原诱发自身免疫性疾病,又可诱导强烈特 异抗肿瘤免疫反应,但目前这种技术要求较高,非特异性影 响因素较多,操作复杂2. 6 mRNA 瘤苗因为单一细胞的mRNA成分易于扩增,则肿瘤RNA或 相应的CDNA文库为肿瘤抗原提供了无限的来源Heiser等 [4]将前列腺癌细胞mRNA转染DC治疗13例患者,可诱导出 明显的T细胞免疫Ashley等[5]用B16总RNA致敏骨髓来 源的DC,介导产生了针对B16肿瘤细胞的特异性CTL,可以 保护无瘤动物免受中枢神经系统肿瘤的攻击,延长荷瘤小鼠 的生存期2.7病毒瘤苗目前发现某些肿瘤的发生与病毒感染密切相关,如EB 病毒感染与B细胞淋巴瘤、霍奇金病、鼻咽癌、外周血T细 胞淋巴瘤等多种肿瘤有关用B细胞淋巴瘤表达的EB病毒 核抗原及潜在膜蛋白的表位肽致敏外周血来源的DC,可以激 活记忆性T淋巴细胞,产生明显的CTL反应细胞毒实验证 实这些CTL可以杀死B细胞淋巴瘤细胞用重组腺病毒载体 负载的EB病毒抗原基因,如潜在膜蛋白2B(LMP2B)修饰DC 基因,48 h后95%以上的DC展示了有效的基因转染,用转 染之后的DC激活CD8+细胞,在第14天针对LMPI肽的T淋 巴细胞反应显著增强,21 d后可以观察到针对自体EB病毒B淋巴瘤细胞的特异性细胞溶解反应,这一现象为EB病毒 疫苗用于EB病毒相关肿瘤的免疫治疗提供支持。

      2.8肿瘤抗原编码基因构建DC将IL 12基因修饰的DC细胞直接注入黑色素瘤 和肉瘤小鼠模型的肿瘤病灶中,可以诱发抗肿瘤免疫 IL 12基因的转染可以促进DC细胞成熟,表现为MHC I, MHC II和共同刺激分子的表达增加肿瘤抗原编码基因导 入DC后可以使其不断释放出肿瘤抗原,从而能更加有效地 激活T细胞3 DC的临床应用DC疫苗已经在一系列肿瘤的临床实验中取得了较好 的效果,在许多患者体内激发了肿瘤特异性的细胞毒性T细 胞反应,并使某些患者体内肿瘤显著消退瑞典和德国的一 个联合小组用抗原多肽或肿瘤细胞溶解产物体外冲击DC,对 16例晚期黑色素瘤患者进行治疗,有5例取得治疗效果,其 中2例多个器官的转移灶完全消失,另3例部分消退美国 斯坦福大学一个研究小组[6]应用抗特异抗体体外冲击致敏 自体DC过继回输,治疗非霍奇金B淋巴瘤患者,结果诱导 患者产生了显著的细胞与体液免疫反应,经治4例患者有1 例瘤体完全消失,另1例瘤体显著缩小用人工合成的 MAGE 3表位肽负载自身的DC治疗HLA A24膀胱癌患者, 可在体外诱导出高效的、特异性的CTL,经治疗的4例膀胱 癌患者3例淋巴结和(或)肝的转移灶明显缩小[7]。

      Liso 等[8]采用独特型抗原肽负载DC治疗26例多发性骨髓瘤患 者,结果有24例产生了 KLH特异性的细胞增殖反应,4例产 生了 1 d特异性的细胞增殖反应,其中3例病灶完全消退 在平均30个月的随访时间内,17例生存美国西雅图1个 研究小组选择PSMA的HLA A0201特异性抗原多肽体外冲击 致敏外周血来源的自体DC,回输治疗51例对激素治疗无效 的前列腺癌患者,结果表明该疗法具有一定的临床应用前景 ⑼4临床治疗存在的问题及展望由于存在阻碍肿瘤特异性CTL效能 的问题,需要采取以下策略:(1)动员、激活肿瘤的免疫T 细胞2)通过增强Fas配体的表达以及抑制IL 10和血 管内皮生长因子的表达3)逆转下降的抗原递呈4)细 胞因子基因修饰增强抗肿瘤作用,如腺病毒介导的IL 2基 因修饰DC,使受抗原冲击的DC在体内诱导出更强的抗肿瘤 免疫应答总之,DC瘤苗是抗肿瘤免疫治疗的新方向根据 目前所进行的临床实验,可以说DC瘤苗用于人体是安全的, 但治疗方案必须个体化、最优化疫苗的制备方案、具体注 射剂量及途径、与其他佐剂联合应用等问题有待进一步的临 床实践和探索现已进行的治疗大部分集中于晚期患者,随 着DC瘤苗的进一步深入研究,由DC介导的抗肿瘤治疗将有 很好的前景。

      参考文献】\[1\] Almand B, Clark J I, Nikitina E,et al. Increased production of immatuie myeloid cells in cancer patients: A mechanism of immunosuppression in cancer\[J\]. J Immunol, 2001,166 (1):678-689・\[2\] Ramadan G, Schmit R E, Schubert J. In vitro generation of human CD86+ dendritic cells derived from CD34+ heamatopoietic progeniors by PMA alone in serumsfree medium\[J\]・ Clin ExpImmunol,2001,125(2):237-244.\[3\] Garderet L, Cao H, Salamero J, et al.Invitro production of dendritic cells from human blood monocytes for therapeutic use\[J\]・ Hema.tother StemCell Res,2001, 10(4):553-567.\ [4\] Heiser A, Coleman D, Dannull J, et al. Autologous dendritic cells transfected with prostate specific antigen RNA stimulate CTL responses against metastatic prostate tumors\[J\]・ The Journal of Clinical Investigation,2002,109(3)409-417.\[5\] Ashley D M, Faiola B, Nair S,et al. Bone marrow generated dendritic cells pulsed ith tumor extracts or tumor RNA indu。

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