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2022年玫瑰精油 提取工艺研究:玫瑰精油提取工艺.docx

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    •   玫瑰精油的化学成分及其抗菌活性  摘 要 通过水蒸汽同步蒸馏法提取玫瑰精油,采用GC-MS方法分析了玫瑰精油的化学组成,共鉴定出其中14个化学成分并测定其相对含量,占总含量的95.25%香茅醇为玫瑰精油的主要成分,相对含量为90.37%体外抑菌实验表明,玫瑰精油除对黑曲霉没有抗菌活性外,对其它7种供试菌均具有不同程度的抑制作用,其中对表皮葡萄球菌、金黄色葡萄球菌和大肠杆菌的最小抑菌浓度(MIC)为0.063% (v/v),对枯草芽孢杆菌、变形杆菌和白色念珠菌的最小抑菌浓度(MIC)为0.125% (v/v),而对绿脓杆菌(Pseudomonasaeruginosa)的抗菌活性相对较弱, M I C为0.5%(v/v)抑菌直径结果也表明了玫瑰精油除对黑曲霉、绿脓杆菌的抗菌活性较弱外,对其它6种菌株的抑菌直径都大于8.5mm考察了玫瑰精油对3种敏感菌株包括金黄色葡萄球菌(革兰氏阳性菌)、大肠杆菌(革兰氏阴性菌)和白色念珠菌(真菌)的杀菌动态过程,为玫瑰精油的应用提供了理论依据  关键词 玫瑰精油;成分;抗菌活性  1玫瑰精油的化学组成  天然玫瑰的精油组成十分复杂,主要成分是单萜类化合物,如香叶醇、香茅醇、芳樟醇等,玫瑰醚、倍半萜烯、倍半萜含氧化合物也占相当比例,其它的化合物有庚醛、乙醇、烷烃系列( C 1 7 ~ C 2 7 ) (玫瑰油石蜡烃的主要成分)等[ 1 ]。

      而这些化学成分含量的多少及化学成分上的差异,造成这些玫瑰油香气的微妙差异[ 2 ]总的说来,香茅醇、香叶醇、B- 2苯乙醇和橙花醇与它们的酯类是构成玫瑰花香的基本成分,是玫瑰的主体香气成分  2玫瑰精油的提取和分离  玫瑰油的生产工艺主要有水蒸气蒸馏法,有机溶剂浸提法、超临界二氧化碳萃取法和分子蒸馏法等玫瑰油称为/液体黄金0,是玫瑰花的提取物玫瑰精油在食品、化妆品、医药、保健品等领域具有重大的应用价值和经济价值,因此其提取被广泛地研究  1玫瑰精油的化学组成  天然玫瑰的精油组成十分复杂,主要成分是单萜类化合物,如香叶醇、香茅醇、芳樟醇等,玫瑰醚、倍半萜烯、倍半萜含氧化合物也占相当比例,其它的化合物有庚醛、乙醇、烷烃系列( C 1 7 ~ C 2 7 ) (玫瑰油石蜡烃的主要成分)等[ 1 ]而这些化学成分含量的多少及化学成分上的差异,造成这些玫瑰油香气的微妙差异[ 2 ]总的说来,香茅醇、香叶醇、B- 2苯乙醇和橙花醇与它们的酯类是构成玫瑰花香的基本成分,是玫瑰的主体香气成分[ 1 ]但玫瑰精油抗菌活性目前国内未见  文献报道,本研究通过玫瑰精油对8种菌株的抑菌直径、M I C、M B C的测定以及杀菌动态研究,揭示了玫瑰精油具有很好的抗菌活性,为玫瑰精油作为细菌感染性疾病的选择性用药,同时也为玫瑰精油的综合开发利用提供了科学依据。

        1仪器和材料  1.1主要仪器  DL2CJ22N超净工作台,LDZX240BN立式自动电热压力蒸汽灭菌器, DPX-9082B-Z恒温培养箱,英国VG platformII,气质联用仪  1.2实验材料与试剂  牛肉膏、蛋白胨、琼脂等皆为生化试剂其它试剂均为分析纯试剂  1.3 玫瑰的来源  玫瑰购自三圣乡花卉市场  1.4 菌种及培养条件  表皮葡萄球菌(Staphylococcus epidermidis,缩写为S.e以下同)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus,S.a)和枯草芽孢杆菌  (Bacillussubtiliis,B.s),大肠杆菌(Escherichiacoli,E.c)绿脓杆菌  (Pseeudomonaseruginosa,P.a)、变形杆菌(Proteusvulgaris,P.v)、白色念珠菌  (Candidaalbicans,C.a)和黑曲霉(Aspergillusnigar,A.n)均接种于中科研 微生物研究所前3种为革兰氏阳性菌,大肠杆菌、绿脓杆菌和变形杆菌为革兰氏阴性菌,后2种为真菌除黑曲霉需用察氏培养基于28℃培养5d外,其余菌种均于营养琼脂培养基在37℃培养24h。

        2 试验方法  2 . 1 菌悬液的制备[7]  将上述供试菌种用适宜的培养基斜面活化后,用  液体培养基制成含菌量约为1 05c f u#m L- 1菌悬液  2 . 2 精油提取与含量测定  采用水蒸气同步蒸馏法提取精油玫瑰花碾  碎后加水沸蒸回流3 h所得精油用无水硫酸钠脱  水,过滤后量取体积取适量精油用正己烷溶解稀  释为体积分数0 . 1 %用于气质联用分析样品测  定前置于- 2 5e下密封贮存[ 8 ]  2 . 3 G C - M S分析方法[9]  气相色谱条件:色谱柱D B - 5 ( 3 0 m@0 . 2 5 m m  @0 . 2 5Lm ) ,进样口温度2 6 0e,柱温6 0e~  2 2 0e升温程序:起始温度6 0e,以1 5e/ m i n升  温至1 6 0e,再以5e/ m i n升温至2 5 0e,维持2  m i n汽化室温度2 5 0e,气质接口温度2 8 0e进  样量1LL ,分流比3 0B1 ;载气为氦气,纯度  9 919 9 % ,流速1 . 2 m L#mi n- 1  质谱条件:离子源为E I源,电子能量7 0 e V ,离子  源温度2 3 0e,四极杆1 5 0e,扫描范围3 0 ~ 5 0 0 a m u。

        经谱库检索并与保留时间相结合鉴定精油各  组分峰,并对色谱峰用面积归一化法进行定量,计  算各组分的相对含量  2 . 4 抗菌活性实验  2 .4 . 1 琼脂扩散法  抑菌直径的测定采用琼脂扩散法[ 1 0 , 1 1 ]用无  菌棉签蘸取1 08c f u#m L- 1的试验菌悬液,在营养  琼脂平板表面均匀涂抹3次,然后绕平板边缘涂抹  一周,盖好表面皿, 4e冰箱保存5 m i n ,滤纸片(用  打孔器将滤纸制成直径为6 . 0 m m的小圆纸片)  1 6 0e干热灭菌2 h ,平放于无菌平皿内,每片滴加  5LL的玫瑰精油,室温自然晾干,用无菌镊子取样  片轻轻贴放于平板表面,每个平板贴2片试验样片,  1片无菌生理盐水对照片放于培养箱内培养,黑  曲霉在2 8e温度下培养5 d ,其它菌株均在3 7e培  养2 4 h测量抑菌圈直径大小,实验重复3次  2 .4 . 2 微量肉汤稀释法  M I C及M B C的测定采用微量肉汤稀释  法[ 1 0 , 1 1 ]M I C ( M i n i m a l I n h i b i t o r y C o n c e n t r a t i o n )为  最小抑菌浓度,即药物与一定浓度的菌液作用后,  能够抑制可见菌生长的最低浓度, M B C ( M i n i m a l  4 8 94期李玉杰等:玫瑰精油的化学成分及其抗菌活性  参考文献。

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