TCID50和PFU的换算公式.docx

TCID50 和 PFU 的换算公式1、PFU:plaqueformingunit,空斑形成单位：感染性滴度的单位一般 表示为PFU/ml由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又 开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位因此建议也可使用TCID50 法2、MOI:multiplicityofinfection，感染复数：传统的 M01 概念起源 于噬菌体感染细菌的研究其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也 就是平均每个细菌感染噬菌体的数量噬菌体的数量单位为pfu一般认 为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfunumber/cell 后来 M0I 被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数 量的比值然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不 同的含义能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用 pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义与传统的概念相同传统意义上的 MOI的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poion分 布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数(MOI)其 公式为：P=1—P(0),P(0)=e—m 或 m=TnP (0)。

其中：P为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0)=1%=0.01m=—In(0.01)=4.6pfu/cell一)原理病毒感染细胞后，由于固体介质的限制，释放的病毒只能由 最初感染的细胞向周边扩展经过几个增殖周期，便形成一个局限性病变细胞区，此即 病毒蚀斑从理论上讲，一个蚀斑是由最初感染细胞的一个病毒颗粒形成 的，因而该项技术常用于病毒颗粒计数和分离病毒克隆但在实际操作中，常出现几个病毒颗粒 同时感染一个细胞的情况，影响滴定的准确性和克隆的纯一性，为此，接 种的病毒液要充分分散和稀释对于细胞结合性病毒，如MDV,需用单层 细胞；对细胞释放性病毒，即可用固相介质悬浮的细胞，也可用单层细胞 但后者需用琼脂等固体介质盖在细胞上，以防释放的病毒在液体介质中流 动固体介质的浓度由病毒的大小而定，大病毒用浓度较低的介质，小病 毒用浓度较高的介质，以便将蚀斑的生长速度控制在适宜的范围内小蚀 斑需用显微镜观察，1-10mm的大蚀斑可用肉眼计数为便于肉眼观察， 常用中性红等染料染色因病变细胞不吸收中性红，病变细胞区便呈现无 色蚀斑。

病毒悬液的滴度以每毫升蚀斑形成单位(PFU/m l)来表示例如， 3个细胞瓶的平均蚀斑是58,接种量为0. 2ml，病毒的稀释度为2.5某 103，则病毒原液的滴度为：58三0.2某2.5某103 = 7.25某105(PFU/ml)PFU = 0.7 某 TCID50 的滴度(二)技术应用蚀斑技术可以应用于分离病毒的克隆(无性繁殖纯系)、 病毒或血清的滴定，也可用蚀斑形态和大小研究病毒的生物学特性1. 病毒生物学纯化(Virubiologicalpurification)在进行血清中和试 验时,常常会出现标准病毒株的滴度下降，因而影响了试验的准确性,这种 情况多见于虫煤病毒这可能是由于原始毒种的混杂,或者已有许多变异 病毒粒子存在其中,甚至出现数量众多的缺陷病毒所致这时,有必要把手 上掌握的标准毒株进行纯化,应用病毒蚀斑技术,挑选出各个不同的纯化病 毒,亦称“克隆株”克隆后的病毒经在敏感细胞上增殖,测定其滴度,选 用合适的毒株用于血清中和试验为了更有效地进行纯化,必须在覆盖营 养琼脂之前用营养液洗去单层细胞上未被吸附的病毒同时要控制好稀释 的浓度，一个培养瓶中的蚀斑数目最好不超过10个，挑取在其附近10mm 都是健康细胞的蚀斑。

挑取后的病毒应传两代或两代以上一般认为，中 性红染料会由于“光敏”作用而抑制病毒蚀斑的形成和破坏宿主细胞因 此，加了中性红覆盖层的培养物应在暗处培养2. 蚀斑减少中和试验(PlaqueReductionNeutralizationTet)蚀斑减少 中和试验是检测血清中和抗体的一种敏感性较高的方法，试验以使蚀斑数 减少50%的血清稀释度作为其中的效价试验使用定量的病毒(100PFU) 与不同稀释度的等量血清混合后感作，接种预先准备好的单层细胞，再覆盖 上营养琼脂置37°C二氧化碳培养箱培养，数天后分别统计蚀斑数，用 Karber 法计算该血清的蚀斑中和效价其操作原理与传统的血清中和试 验大致相同由于本试验的操作比较繁锁，目前在国内极少应用，国际 上也没有把它作为一种各国都接受的诊断方法，仅在0IE国际动物卫生法 典(第六版)中列为对裂谷热的规定诊断方法之一)(三)操作实例1. 赤羽病病毒(AKV)的滴定或纯化(1) 于55mm直径的灭菌塑料培养皿中培养绿猴肾细胞(Vero)，使形成 单层细胞培养时间约3－4天，接种量约为 2000000/ml 个细胞？选取 单层细胞全部覆盖，不留有空洞的培养皿用作试验。

2) 用细胞培养液对 AKV 病毒作 10 倍倍比稀释至 10-7 并保存于 4C(3) 每个稀释度的病毒液接种 3 个平皿4) 接种前弃去细胞培养液，用5mlPBS或细胞培养液冲洗单层细胞，然 后弃去冲洗液5)每个平皿分别加入0.2ml病毒稀释液，对照组只用细 胞培养液代替，置37°C二氧化碳培养箱吸附一小时，每15分钟摇动一次, 以便使病毒均匀分布6)按第 4 步骤冲洗未被吸附的病毒7) 取2 倍浓缩的细胞培养液加入等量的1.5％琼脂(预热)中，每个平皿加入7ml,置平台待冷却凝固后于37C二氧化碳培养箱培养约2天， 平皿需倒置8) 取2倍浓缩的细胞培养液加入等量的2％琼脂(预热)中，每个平皿加入5ml,置平台待冷却凝固后于37C二氧化碳培养箱中培养至次日9) 结果计算求每组三个培养皿的蚀斑平均数，组间蚀斑数的差异应 符合稀释度的规律(即若10-2组平均100个蚀斑，则10-3组平均应在10 个左右)，否则应考虑重新试验以平均蚀斑数乘以病毒稀释的倍数再乘 以 5，即为每毫升病毒原液的蚀斑数10)选取特征性的若干蚀斑，分别 以弯头吸管在琼脂层下吸取蚀斑以收获病毒，然后分别接种到预先制备的 单层细胞培养瓶中进行增殖或传代。

11)本试验采用BHK21细胞，可应用 于牛流行热病毒(BEFV)2. 蓝舌病病毒(BTV)血清型鉴定试验(纸片法)(1)抗体纸片制备① 取已知各种血清型毒株以1某107蚀斑形成单位接种绵羊,接种后3-4 周采血分离血清② 制备直径0.5mm的中性滤纸片，121C15分种灭菌后保存于干燥环 境③ 取上述滤纸片浸入不同血清型的免疫血清后真空冻干，保存于4C 冰箱备用，使用前以灭菌水湿润2)病毒接种① 用直径6cm的塑料培养皿培养BHK21或Vero细胞使成单层②以 103PFU/0.2ml被检蓝舌病病毒接种于细胞上，吸附lh③洗去未被吸附的 病毒，弃去洗液3)覆盖琼脂① 取2倍浓缩的细胞培养液加入等量的1.5%琼脂，每个平皿加入 7ml,置平台冷却凝固② 在琼脂面上按梅花形图案放上不同型的血清滤纸片,并做好记号③ 把平皿放置在37°C二氧化碳培养箱培养2天④ 真空吸出平皿中的滤纸片⑤ 取2倍浓缩的细胞营养液加入等量的2%琼脂，每个平皿加入5ml, 重新置37C二氧化碳培养箱培养2-3天，待明显蚀斑抑制环出现4)结果判定出现明显抑制蚀斑形成(即滤纸片位置下仍保持活细胞被 染色)的免疫血清即为该被检病毒的血清型。

注：本试验方法同时可应用于鹿流行性出血病病毒(EHDV)与蓝舌病病 毒(BTV )的鉴别3. 新城疫病病毒(NDV)分离(1) 取疑似患病禽的组织用细胞培养液匀浆,离心沉淀后取上清液2) 用 16 孔微量培养板制备鸡成纤维原代细胞3) 细胞长成单层后吸去培养液，向每孔滴加 0.1ml 被检病料,置 37C 吸附 2 小时后弃残液4) 制备1%琼脂的BME，置40 — 50C水浴待用5) 吸取上述琼脂加入培养板各孔，每孔0.5ml,使冷却凝固成覆盖 层6)把培养板倒置，在37°C二氧化碳培养箱培养48h7) 制备含0.002%中性红的1%琼脂的BME，置40 — 50C水浴待用8) 吸取上述琼脂加入培养板各孔，每孔0.5mL,使冷却凝固成第二 覆盖层9)把培养板倒置，在37C二氧化碳培养箱继续培养，48小时内 观察结果10)挑出蚀斑下的细胞作病毒的进一步增殖和鉴定注：本试验方法在样品中病毒含量少的情况下比单纯用细胞培养分离 要敏感4. 试验用各种成份的配制(1)细胞营养液(用于稀释病毒)10倍199保存液：4ml犊牛血清：0.8ml3%碳酸氢钠：2.4ml双蒸水：32.8ml, 40ml(2)两倍浓缩细胞营养液(配制首层琼脂用)：10倍199保存液：20ml犊牛血清：4ml3%碳酸氢钠：12ml1%二乙氨基乙基(DEAE)： 10ml(可选择)双蒸水：54ml, 100ml(置40— 45C水浴备用)(3)1.5%琼脂：精制琼脂糖：1.5g双蒸水：加至 100ml(0.112MPa高压灭菌15分钟，置40 — 45C水浴备用。

)(4)含中性红两倍浓缩细胞营养液(配制第二层琼脂用)：10倍199保存液：20ml犊牛血清：10ml3%碳酸氢钠：12m 10.5%中 性红：6ml双蒸水：52ml, 100m1(置40 — 45°C水浴备用)说明：在第二层琼脂中，中性红的最终浓度应为1:5000－1:100005)2%琼脂：精制琼脂糖：2g双蒸水：加至 100ml(0.112MPa高压灭菌15分钟，置40 — 45C水浴备用)定血清—稀释病毒法(病毒中和试验)1.病毒毒价的测定毒价单位：衡 量病毒毒价(毒力)的单位，过去多用最小致死量(MLD)，即经规定的途径, 以不同的剂量接种试验动物，在一定时间内能致全组试验动物死亡的最小 剂量但由于剂量的递增与死亡率递增不呈线性关系，在越接近100%死 亡时，对剂量的递增越不敏感而一般在死亡率越接近50%时，对剂量 的变化越敏感，故现多改用半数致死量(LD50)作为毒价测定单位，半数致死量(LD50)作为毒价测定单位即经规定的途径，以不同的剂量 接种试验动物，在一定时间内能致半数试验动物死亡的剂量用鸡胚测定时，毒价单位为鸡胚半数致死量(ELD50)或鸡胚半数感染 量(EID50)。

用细胞培养测定时，用组织细胞半数感染量(TCID50)在测定疫苗的免疫性能时，则用半数免疫量(IMD50)或半数保护量 (PD50)1) LD50 的测定(以流行性乙型脑炎病毒为例)测定方法：将接种病毒，并已发病濒死的小鼠，无菌法取脑组织，称 重、加稀释液充分研磨，配制成10-1悬液，3000r/min离心20分钟，取 上清液，以10倍递次稀释成10T、10-2、10-3……10-9，每个稀释度分 别接种5只小鼠，每只脑内注射0.03ml，逐日观察记录各组的死亡数表 2-24LD50 的计算（接种剂量为 0.03ml）病毒稀释度接种鼠数活鼠数死鼠数积累总计死亡比死亡率（%）活鼠死亡 10-450501515/1510010-550501010/1010010- 6514155/68310-7541511/61710-85501000/10010-95501500/150LD50 的计算：按 Reed 和 Muench 氏法计算高于 50%的死亡分数-50%83%-50%距离比例二 二 =0.5 高于50%的死亡百分数-低于 50%的死。