
各种酶活性测定方法(2022年整理).pdf
5页抗坏血酸过氧化物酶(抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性的测定)活性的测定 过氧化氢酶(过氧化氢酶(CAT)活性测定)活性测定 过氧化物酶(过氧化物酶(POD)测定方法)测定方法 超氧化物歧化酶(超氧化物歧化酶(SODSOD)活性测定)活性测定 小组第一次讨论结果: 一、抗坏血酸过氧化物酶(一、抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性的测定)活性的测定 1.原理原理 APX 是植物体内重要的抗氧化酶, 主要功能是分解H2O2, 此过程通过抗坏血酸- 谷胱甘肽循环来完成此外, 它还直接参与抗坏血酸的氧化还原代谢, 而抗坏血酸能有效地清除多种活性氧自由基因此,APX被认为与果实的抗热性直接相关 2.所用方法所用方法 (1)采用碘液滴定法: 称取新鲜材料1 g,剪碎置研钵中,加少量石英砂及pH值6.0 的磷酸盐缓冲液,迅速研磨成浆,20 下浸提30 min,中间摇动数次,3000 r /min 离心后保留上清液即为酶液反应底物为抗坏血酸,加入酶液2 mL,20 下反应10 min 后,立即加入偏磷酸1 mL,终止酶的活动,抗坏血酸被消耗的量,可用碘液滴定剩余的抗坏血酸来进行测定,加淀粉溶液几滴作指示剂,以碘液滴定出现浅蓝色为止,记录滴定值,用底物被消耗的量来表示APX 的活性。
每个处理设3 个重复 (2)紫外吸收法: 称取 1g 芥蓝叶片组织,加入 1.6 mL 预冷的磷酸缓冲液(PBS-K) (pH 7.8)提取液(含 1 mmol L-1 AsA,3 mmol L-1-巯基乙醇,0.5 mmol L-1PMSF,2% PVP,1 mM EDTA) 用液氮研磨,提取液于 4,12000 g 离心 20 min,上清液用于酶活性的测定取 0.10 ml 酶液(可视情况调整) ,加入 1.70 ml 含 0.1 mM EDTA-Na2的 PBS(0.05 mol/L,pH7.0) ,再加入 0.10 ml 5 mM 的 AsA,最后加入 0.10 ml 20mM H2O2,立即在 20下测定 D290(紫外)值在一定时间内的变化,计算单位时间内 AsA 减少量,并求酶活性(室温下测定,缓冲液调零) APX 总活性(uM g-1 min-1) = OD Vr/ (A d Vt W t) OD:反应时间内吸光度的变化; t:反应时间,min; Vr:提取液体积,mL; A:消光系数,2.8mM-1cm-1; d:比色杯厚度,1cm; Vt:测定液体积,mL; W:样品鲜重,g。
二、二、 过氧化氢酶(过氧化氢酶(CAT)活性测定)活性测定 1.原理原理 过氧化氢酶(CAT)属于血红蛋白,含有铁,能够催化过氧化氢分解为水和氧分子,此过程中起传递电子的作用,过氧化氢既是氧化剂又是还原剂,因此可根据 H2O2的消耗量或 O2的生成量测定该酶活力大小 在反应系统中加入一定量(反应过量)的过氧化氢溶液,经酶促反应后,用标准高锰酸钾溶液(在酸性条件下)滴定多余的过氧化氢即可求出消耗的 H2O2的量 2.CAT 活性测定方法活性测定方法 碘化钾滴定法: 本方法利用 H2O2能将 KI 中的 I-氧化, 生成 I2, 以淀粉作为滴定终点指示剂,用硫代硫酸钠滴定,计算出生成 I2的量,再换算所消耗 H2O2的量取 100ml 三角瓶 6 个,编号,向各瓶准确加入稀释后的酶液 10ml 立即向 4、5、6 号瓶中各加入 3.6ml/L 硫酸 5ml 以终止反应作为空白测定然后将各瓶放在 20 错误错误!未找未找到引用源到引用源水浴中保温,待瓶内温度达到 20 错误错误!未找到引用源未找到引用源时,并向各瓶准确加入 5ml0.1mol/LH2O2摇匀,记录时间5min 后再依次向 1、2、3 号瓶中各加入 3.6mol/L 硫酸 5ml 终止酶促反应,然后向每瓶各加 20%碘化钾 1ml,3 滴钼酸铵及 5 滴淀粉指示剂。
用 0.02mol/L 硫代硫酸钠滴定至蓝色消失 过氧化氢酶活性=错误错误!未找到引用源未找到引用源 A:空白值滴定值(ml) B:样品滴定值(ml) C:Na2S2O2浓度(mmol/L) a:测定时酶液用量(ml) V:酶液总体积 W:样品重(g) t:反应时间(min) 17:1/2H2O2的摩尔质量(mg) 2.紫外吸收法: H2O2 在 240nm 波长下有强烈吸收,过氧化氢酶能分解过氧化氢,使反应溶液吸光度(A240)随反应时间而降低测量吸光率的变化即可测出过氧化氢酶的活性 试管号 S1 S2 S3 提取液(ml) 0.4 0.4 0.4 失活酶液 缓冲液(ml) 3.0 3.0 3.0 蒸馏水(ml) 2.0 2.0 2.0 25预热后,逐管加入 0.3ml 0.1mol/L 的 H2O2,每加完一管立即记时,并迅速倒入比色杯中,240nm 下测定吸光度,每隔 1min 读数 1 次,共测 4min,待 3 支管全部测定完后,计算以 1min 内 A240 减少 0.1 的酶量为 1 个酶活单位(u)过氧 化 氢 酶 活 性 u/(g min)= A240 VT/(0.1V1 t W) 。
其 中 A240 = AS3- (AS1-AS2)/2; AS1、AS2 样品管吸光值; AS3 加入失活酶液的对照管吸光值; VT 粗酶提取液总体积(ml); V1 测定用粗酶液体积(ml); W 样品鲜重(g); 0.1是 A240 每下降 0.1 为 1 个酶活单位(u); t 加过氧化氢到最后一次读数时间(min) 三、过氧化物酶(三、过氧化物酶(POD)测定方法)测定方法 1.原理原理 过氧化物酶广泛分布于植物的各个组织器官中在有过氧化氢存在下,过氧化物酶能使愈创木酚氧化, 生成茶褐色物质, 可用分光光度计测量生成物的含量 2.POD活性测定方法活性测定方法 比色法: 称取植物材料 1 g ,剪碎,放入研钵中,加适量的磷酸缓冲液研磨成匀浆,以 4000 r min 离心 10 min ,上清液转入 100 mL 容量瓶中,残渣再用 5 mL 磷酸缓冲液提取一次, 上清液并入容量瓶中, 定容至刻度, 贮于低温下备用 2 、 取光径 1 cm 比色杯 2 只, 于 1 只中加入反应混合液 3 mL 和磷酸缓冲液 1mL ,作为对照,另 1 只中加入反应混合液 3 mL 和上述酶液 1mL (如酶活性过高可稀释之) , 立即开启秒表记录时间, 于分光光度计上测量波长 470 nm 下吸光度值,每隔 1min 读数一次。
3、结果计算 以每分钟吸光度变化值表示酶活性大小,即以 A 470 /min g (鲜重) 表示之也可以用每 min 内 A 470 变化 0.01 为 1 个过氧化物酶活性单位( u )表示 过氧化物酶活性 u/ ( g min ) A470为反应时间内吸光值的变化; W为所称样品重,g; t为反应时间,min; VT为提取酶液总体积,ml; VS为测定时取用酶液体积,ml 四、四、超氧化物歧化酶(超氧化物歧化酶(SODSOD)活性测定(氮蓝四唑光化还原法)活性测定(氮蓝四唑光化还原法) 1、试剂的配制 (1)0.05mol/L 磷酸缓冲液(PBS,pH7.8): A 母液:0.2mol/L 磷酸氢二钠溶液: 取 Na2HPO412H2O(分子量358.14)71.7g; B 母液:0.2mol/L 磷酸二氢钠溶液:取 NaH2PO42H2O(分子量156.01)31.2g 分别用蒸馏水定容到 1000ml 0.05mol/L PBS (pH7.8) 的配制: 分别取 A 母液(Na2HPO4) 228.75ml,B 母液(NaH2PO4) 21.25ml,用蒸馏水定容至 1000ml。
参考文献:参考文献:李合生主编:植物生理生化实验原理和技术.高等教育出版社,2000:267268 (2) 14.5mM甲硫氨酸溶液: 取2.1637g Met用磷酸缓冲液 (pH7.8)定容至 1000ml (3)30M EDTA-Na2溶液:取 0.001gEDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至 100ml (4)60M 核黄素溶液:取 0.0023g 核黄素用磷酸缓冲液定容至 100ml,避光保存 (5)2.25mM 氮蓝四唑(NBT)溶液:取 0.1840g NBT 用 PBS 定容至 100ml,避光保存 酶液制备:取 0.2g(可视情况调整)样品(新鲜叶片或根系)洗净后置于预冷的研钵中,加入 1.6ml 50mmol/L 预冷的磷酸缓冲液(pH7.8) 在冰浴上研磨成匀浆, 转入离心管中在 4、 12000r / min 离心 20min,上清液即为酶液 2、酶活性测定 (1)反应混合液配制:分别取 Met 溶液 162ml,EDTA-Na2溶液0.6ml,磷酸缓冲液 5.4ml,NBT 溶液 6ml,核黄素溶液 6ml,混合后摇匀; (2)分别取 3ml 反应混合液和 30l 酶液于试管中 (3)将试管置于光照培养箱中在 4000 lux 光照下反应 20min; 同时做两支对照管,其中 1 支试管取 3ml 反应混合液加入 30l PBS(不加酶液)照光后测定作为最大光还原管,另 1 支只加缓冲液置于暗中测定时用于调零。
(4)以不照光的对照管(只有缓冲液并置于暗处)调零后,避光测 OD560(出现颜色即可测定) (5)酶活性计算:SOD 活性单位以抑制 NBT 光化还原 50所需酶量(测的样品值要在最大管的一半左右才合适,否则要调整酶量)为 1 个酶活单位(u) SOD 总活性 ( Ack-AE )V/(1/2AckWVt) SOD 比活力SOD 总活性/蛋白质含量 SOD 总活性以鲜重酶单位每克表示(u/g FW) ;比活力单位以酶单位每毫克蛋白表示;Ack为照光对照管的吸光度;AE为样品管的吸光度;V 为样品液总体积(ml,1.6ml,加入 PBS 的体积);Vt 为测定时的酶液用量(ml,30ul) ;W 为样品鲜重(g,测定时应换算为叶绿体的质量 mg) ;蛋白质含量单位为 mg/g。












