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双水相系统PPT课件.ppt

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    • 19 双水相萃取 19.1 双水相的形成n亲水性的聚合物溶液n熵增——混合——自发n分子间作用力------随着Mr的增加,而增大.n聚合物的不相容性------含有聚合物分子的溶液发生分相的现象.n相图:相平衡时物系的组成,温度与压力的关系. 19.1 双水相的形成双水相系统双水相系统(aqueous two-phase system, ATPS) PEG = 聚已二醇(polyethylene glycol)Kpi = 磷酸钾DX = 葡聚糖(dextran)1、Pro如何分布2、影响因素3、应用 19.2 ATPS相图相图双节线双节线(bi-nodal):图中的曲线双节线以下的区域为均相区,以上的区域为两相区,即ATPS 系线系线(tie line):双节线上两点的直线系线反映的信息系线反映的信息A 杠杠杆杆规规则则::系线上各点均为分成组成相同,而体积不同的两相两相体积近似服从杠杆规则B 性性质质差差异异:系线的长度是衡量两相间相对差别的尺度,系线越长,两相间的性质差别越大;反之则越小.C 临临界界点点(critical point):当系线长度趋于零时, 两相差别消失,任何溶质在两相中的分配系数均为1。

      如K点 19.3 蛋白质的分配平衡 1)分配系数分配系数m2)m贡献因子贡献因子me、mb和ma分别为静电、疏水和亲和作用对溶质m的贡献. 3)、静电作用、静电作用非非电电解解质质型型溶溶质质:电电中中性性蛋蛋白白质质的的m0: 式式中中, M: 溶溶质质分分子子量量; : 溶溶质质在在上上 下下 两两 相相 表表 面面 自自 由由 能能 的的 差差 , J/mol意义:意义:A 不受静电作用的影响不受静电作用的影响(因不带电因不带电);B 一般一般 > 0,不同溶质,不同溶质lnm随随M  而而 ;;C ATPS不不同同, 同同一一溶溶质质的的也也就就不同,不同,m随随ATPS不同而改变不同而改变图图是是不不同同pro在在pH为为各各pro的的pI的的ATPS中的中的m, 道南电位道南电位(, Donnan potential)实际实际ATPS中有电解质中有电解质, 当这些离子在两当这些离子在两相中相中m   1), 将两相间产生电位差将两相间产生电位差 带电带电pro的的m:意义:意义:A 荷电溶质的分配系数的对数与溶质的荷电溶质的分配系数的对数与溶质的净电荷数成正比净电荷数成正比.B 由于同一由于同一ATPS中添加不同的盐产生中添加不同的盐产生的的不同不同,故故m与与Zpro的关系因盐而的关系因盐而异。

      异 4)疏水作用疏水作用相间疏水因子相间疏水因子(HF, hydrophobic factor)PEG/DX和PEG/KPi等ATPS上相(PEG相)疏水性较大,相间的疏水性差用HF表示. HF可通过测定疏水性已知的aa在其pI处的maa测算:RH-aa相对疏水性(relative hydrophobicity).是通过测定aa在水和已醇中溶解度的差别确定的,并设疏水性最小的Gly的RH=0.所以,上式中的B为:mGly为Gly分配系数. 所以, pH=pL时aa在ATPS中的分配系数与其RH值呈线性关系,直线的斜率就是该双水相系统的HF值.图为测定实例. Pro表面疏水性表面疏水性(HFS, HF of surface)利用上式可确定不同ATPS的HF值.如在pH = pI的ATPS中, pro的m0与HF值之间呈线性关系, 则直线的斜率定义为该蛋白质的HFS图为蛋白质的m0与HF的实测关系图图的结果示:pro的HFS随NaCl浓度的增大而增大将盐对pro的HF影响上式得:其中HFSsalt为盐增加而引起的HFS值增量因此,m的一般形式 19.4 影响蛋白质m的综合因素1)成相聚合物浓度和分子量成相聚合物浓度和分子量分分子子量量M: 若降低聚合物的M,则pro分配于富含该聚合物的相中。

      如PEG/DX系统,若降低DX的M,则m减小这一规律具有普遍意义成成相相系系统统的的总总浓浓度度::增大时,系统远离临界点,系线长度增加,两相性质的差别(疏水性等)增大,蛋白质分子的分配系数将偏离临界点处的值(m=1),即大于1或小于1.因此,成相物质的总浓度越高,系线越长,蛋白质越容易分配于其中的某一相.. 存在问题:当系线长度增加时,系统的表面张力增大,可能导致溶质在界面上的吸附.这种现象在处理含细胞和固体微粒的料液时尤为严重,细胞或固体微粒容易集中在界面上,给萃取操作带来因难,.但对于可溶性蛋白质.这种界面吸附现象很少发生,一般可不考虑 2)盐盐:图为各种离子在PEF/DX系统中的m. 图示:HPO42-和H2PO4-(H1.5PO4-1.5)离子在PEG/DX系统的m小, 因此利用pH > 7的磷酸盐buffer很容易改变,使带负电pro有较高的m.HFS:盐的种类和浓度影响pro的HFS, 从而影响pro的m当盐的浓度很大时(如>1mol/dm3), 由于强烈的盐析,蛋白质的溶解度达到极限,表现分配系数增大,此时m与pro浓度有关利用这一特点,通过调节ATPS盐浓度,可选择性萃取不同的pro。

      不不良良影影响响::改变各相中成相物质的组成和相体积比如PEG/Kpi系统中上、下相(或称轻重组)的PEG和磷钾浓度 3)、pH valueA(pH – pI) valuepro(Z)lnm B 交交错错分分配配法法(cross partitioning): 当加入不同种类的盐时,由于相间电位不同,lnm–pH关系曲线也不一样但在pro的pI处,由于Z=0,m应相同,即两条关系曲线交于一点所以, 通过测定不同盐类存在下 lnm–pH曲线的交点,可测定蛋白质\细胞器以及微粒的pIC pH影影响响磷磷酸酸盐盐解解离离::即影响PEG/Kpi系统的相间电位和蛋白质的分配系数对某些pro, pH的很小变化会使m改变2~3个数量级 4) 温度温度 温度影响小, 一般温度改变不影响产物的萃取 大规模操作一般在室温下进行,不需冷却这是基于:(1) 成相聚合物PEG对蛋白质有稳定作用,常温下蛋白质不会发生变性;(2) 常温下溶液粘度较低,容易相分离;(3) 常温操作节省冷却费用. 体系的选择和优化1)体系选择的原则:)体系选择的原则:基本公式:根据目标pro和共存杂质的HFS\M\pI\Z等的差别, 综合利用静电、疏水和添加适当种类和浓度的盐,可选择性萃取目标产物。

      若目标产物与杂蛋白的表面疏水性HFS相差较大,充分发挥盐析作用;提高成相系统的浓度(系线长度),增大ATPS的HF,也是选择性萃取的重要手段 改变系线长度还可以使细胞碎片选择性分配与于PEG/盐系统的下相;采用M较大的PEG可降低pro的m,使萃取到PEG相的pro总量减少,从而提 高 目 标 蛋 白 质 的 选 择 性 例 如 , 采 用6.3%PEG6000/10%Kpi系统,可从细胞匀浆液中将半乳酸糖苷提纯12倍,而使用低分子量PEG时,萃取的选择性降低[17].此外,在磷酸盐存在下于pH7的范围内调节pH也可提高目标产物的萃取选择性. 在上述理论基础上,设计合理的试验,可确定最佳萃取系统. 双水相萃取放大容易: 一般10ml离心管的实验结果可直接放大到工业规模. 因此,常利用多组10ml刻度离心管,进行分配平衡实验. 具体实验步骤如下.(1) 配制一系列不同浓度、pH及离子强度的双水相, 每个双水相改变一个参数. 其中pH通常用磷酸盐缓冲液或氨酸调节. (2) 加入料液, 再加水使整个系统质量达到5~10g.离心管封口后充分混合;(3) 在1800~2000g下离心3~5min,使两相完全分离;(4) 小心地用吸管或移液管将上相和下相分别吸出,测定上、下相中目标产物的浓度或生物活性, 计算分配系数. 上、下两相中目标产物的总量应与加入量对比,以检验是否存在沉淀或界面吸附现象,并可确认浓度或活性测定中产生的系统误差。

      19.5应用1) 蛋白质、酶的纯化蛋白质、酶的纯化2) 多肽的分离纯化多肽的分离纯化 3) 核酸的分离纯化核酸的分离纯化 4)、病毒、细胞、细胞器的分离、病毒、细胞、细胞器的分离 反胶束萃取 (反胶团萃取) 1基本术语胶胶束束(micelles): 向水水中加入表面活性剂,水溶液的表面张力随[S]增大而下降当[S]达到一定值后,S缔合形成水溶性胶束, 溶液的表面张力不再随表面活性剂浓度的增大而降低胶团形成均是S分子自聚集的结果,是热力学稳定体系自自组组装装(self-assembly): 自动有序聚集的过程临临 界界 胶胶 束束 浓浓 度度 (critical micelle concentration,CMC): S在水溶剂中形成胶束的最低浓度 n反胶束反胶束(reverse micelles): 若向有机溶剂有机溶剂中加入一定浓度S,在有机溶剂中所会形成胶束当形成反胶束时,水在有机相中的溶解随[S]线性增大因此,可通过测定有机相中平衡水浓度的变化,确定形成反胶团的最低表面活性剂浓度n反胶束的形态:反胶束的形态:球形或近似球形,也呈柱状。

      n极性核极性核(polar core): S分子的自组装形成了极性核n微水相或微水相或“水池水池”(water pool):反胶束内溶解的水 2基本性质基本性质内内水水池池直直径径d d::反反胶胶束束的的大大小小与与溶溶剂剂和和S S的的种种类类与与浓浓度度、、温温度度、、I I等等因因素素有关,一般为有关,一般为5-20nm5-20nm,,d d用下式计算:用下式计算: W W0 0- -有有机机相相中中水水与与S S的的摩摩尔尔比比,,又又称称为为含含水水率率(water (water content)content);;M-M-水水分分子子质量;质量;a asurfsurf- -界面处一个界面处一个S S的面积;的面积;N-N-阿弗加德罗常数阿弗加德罗常数内内水水的的性性质质::当当W W0 0较较低低 ( (如如S S = = AOT, AOT, W W0 0 = = 6-8)6-8)时时, , 微微水水相相的的水水分分子子受受S S亲亲水水基基团团的的强强烈烈束束缚缚, , 表表观观粘粘度度上上升升5050倍倍, , 疏疏水水性性也也极极高高随随W W0 0的的增增大大, , 这这些些现现象象逐逐渐渐减减弱弱, , 当当 W W0 0>16>16时时, , 微微水水相相的的水水与与正正常常的的水水接接近近, , 反反胶胶团团内内可可形形成成双双电电层层。

      但但即即使使当当W W0 0值值很很大大, , 水水池池内内水水的的理理化化性性质质也也不能与正常的水完全相同不能与正常的水完全相同, , 特别是在接近特别是在接近S S亲水头的区域内亲水头的区域内 nAOTAOT反胶团直径反胶团直径d dAOT: AOT: 常用于制备反胶束的常用于制备反胶束的S S是二是二-(2--(2-已已基已基基已基) )琥珀酸酯磺酸钠琥珀酸酯磺酸钠, ,商品名为商品名为Aerosol OT, Aerosol OT, 即即AOTAOT其在异辛烷中形成反胶团其在异辛烷中形成反胶团d dAOT: AOT: n n第第1 1项为水核直径,第二项项为水核直径,第二项(2*1.2 nm)(2*1.2 nm)为二倍为二倍AOTAOT分子长分子长度度. . 一般反胶团的一般反胶团的W0W0不超过不超过40. 40. 因此因此, , 依据上式依据上式, , 利用利用ATOATO形成的水核直径一般不超过形成的水核直径一般不超过12nm, 12nm, 大致可容纳一个大致可容纳一个直径为直径为5-10nm5-10nm的的propro分子分子. . 当当propro分子比与反胶团直径相分子比与反胶团直径相比大得多时比大得多时( (如如, ,当当M > 100-200kD),M > 100-200kD),难于溶解到反胶团难于溶解到反胶团中中. . 3反胶束的溶解作用微水池溶解和分离作用微水池溶解和分离作用:反胶团的微水池的水可溶解氨基酸、肽和蛋白质等生物分子, 为生物分子提供易于生存的亲水微环境. 因此,反胶团萃取可用于氨基酸、肽和蛋白质等生物分子的分离纯化,特别是蛋白质类生物大分子。

      蛋白质溶解模型:蛋白质溶解模型:a、、水水壳壳模模型型::蛋白质位于水池的中心,周围存在的水层将其与反胶团壁隔开;b、、半半岛岛模模型型::pro表面存在强烈疏水区,该区直接与有机相接触;c、pro吸附于反胶团内壁;d、pro疏水区与几个反胶团的S疏水尾发生相互作用,被几个小反胶团所“溶解” 3反胶束的溶解作用溶解推动力溶解推动力A 静电作用:静电作用:理理论论上上, ,当当溶溶质质所所带带电电荷荷与与表表面面活活性性剂剂相相反反时时, ,由由于于静静电电引引力力的的作作用用, ,溶溶质质易易溶溶于于反反胶胶团团, ,溶溶解解率率或或分分配配系系数数较较大大, ,反反之之, ,则则不不能溶解到反胶团相中能溶解到反胶团相中, ,左左图图为为pHpH值值对对不不同同蛋蛋白白质质的的溶溶解解率率急急剧剧变变化化, ,当当pH pH , ,即即在在带带正正电电荷荷的的pHpH范范围围内内蛋蛋 白白 质质 的的 溶溶 解解 率率 接接 近近100%,100%,说说明明静静电电相相互互作作用用对对蛋蛋白白质质的的反反胶胶团团萃萃取取起起决定性作用决定性作用 3反胶束的溶解作用B B 空间相互作用空间相互作用 盐盐浓浓度度增增大大对对反反胶胶团团相相产产生生脱脱水水效效应应, , 含含水水率率W W0 0随随盐盐浓浓度度的的增增大大而而降降低低, ,反反胶胶团团直直径径减减小小, , 空空间间排排阻阻作作用用增增大大, , propro溶溶解解下下降降. . 如如,,AOT/AOT/异异辛辛烷烷系系统统的的含含水水率率与与I I-0.5-0.5成成正正比比。

      图图中中W W0 0与与NaClNaCl浓度关系为浓度关系为: :图图还还示示::AOT/AOT/异异辛辛烷烷系系统统的的含含水水率率与与AOTAOT浓浓度度无无关关, ,这这是多数反胶团系统的共性是多数反胶团系统的共性. . 在在各各propro的的pIpI处处( (排排除除了了静静电电相相互互作作用用的的影影响响) ),,反反胶胶团团萃萃取取实实验验研研究究表表明明: : 随随着着M M增增大大, , propro的的分分配配系系数数(m, (m, 溶溶解解率率) )下下降降当当M M > > 20KD20KD时时, , m m很很小小. . 表表明明随随M M增增大大, , 空空间间排排阻阻作作用用增增大大, , propro的的溶溶解解率率降降低低. . 图图的的结结果果还还表表明明, , 要要据据propro间间M M的差别可以选择性对的差别可以选择性对propro进行萃取分离进行萃取分离C 疏水性相互作用疏水性相互作用aaaa的的疏疏水水性性各各不不相相同同, , 研研究究表表明明, ,除除pHpH和和I I外外, , aaaa或或肽肽的的m m随随aaaa疏疏水水性性的的增增大大而而增增大大[39][39]. .蛋蛋白白质质的的疏疏水水性性影影响响其其在在反反胶胶团团中中的的溶溶解解形形式式, ,因因而而影影响响其其分分配配系系数数. . 疏疏水水性性较较大大的的propro可能以可能以““半岛式半岛式””形式溶解。

      形式溶解D 分配系数分配系数m(or K): 4反胶束萃取的操作A 萃取的基本方法萃取的基本方法B 反萃取反萃取 . C 分级萃取分级萃取 5反胶束萃取的影响因素1) pH valueAOT = 二-(2-已基已基)琥珀酸酯磺酸钠 2)盐浓度盐浓度盐浓度W0S&Pro Z选择性 3)、盐离子的种类、盐离子的种类 4) 蛋白质分子量蛋白质分子量M 5)、表面活性剂、表面活性剂SA 种类B [S] 6) 助表面活性剂助表面活性剂 6应用1) 蛋白质分离蛋白质分离 6应用2) 胞内酶的提取胞内酶的提取3) 蛋白质复性蛋白质复性( protein refolding ) 思考题思考题 。

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