植物雌激素及其作用靶点的研究进展医学论文.doc

植物雌激素及其作用靶点的研究进展_医学论文 【关键词】 ,雌激素受体［关键词］雌激素类; 作用靶点; 雌激素受体　　Progress in research on phytoestrogens and their effect targets　　自从Setchell和Adlercreutz首次发表异黄酮和木酯体与哺乳动物雌激素结构的相似性，并阐述它们可能具有防癌作用以来，植物雌激素就受到人们的广泛关注［1］目前，运用雌激素替代疗法 治疗 更年期综合征、骨质疏松症、老年性痴呆等疾病取得了较好的疗效但是，长期使用雌激素有诱发乳腺癌、子宫内膜癌和肺栓塞的危险而植物雌激素的研究为人类寻觅有效而安全的雌激素依赖性疾病的治疗药物展示了新的前景本文就植物雌激素及其作用靶点的研究进展进行综述 　 　1雌激素受体 　　雌激素受体（estrogen receptor，ER）属于甾体激素受体大家族，以寡聚糖的形式位于胞浆内，一旦与雌激素结合即形成有活性的单体，迅速从胞浆转移至胞核内，与胞核内特异性DNA顺序上的雌激素反应元件结合，从而激活激素依赖性基因的转录、翻译，合成蛋白质，最终促进细胞的分裂、繁殖和生长［2］。

ER有两个亚型，即ERα与ERβ自1986年克隆出ERα，1996年Kuiper等［3］从大鼠卵巢和前列腺cDNA文库中成功地克隆出ERβ以来，人们对这两个ER亚型的结构及分布已经有了比较全面的了解　　1.1ERα与ERβ的结构 ERα和ERβ蛋白分子自N端起分为A、B、C、D、E、F区，其中A/B区是转录调控区，参与受体对靶基因的转录激活ERα与ERβ的A/B区在不同种属间其长度变化较大，为高度可变区，是受体抗体的结合部位，并与受体作用的特异性有关；C区为DNA结合区（DNA binding domain, DBD），是受体与DNA结合的功能区域，而且是核受体家族中富含半胱氨酸的最保守区域； D区可与热休克蛋白结合，有稳定受体与DNA结合的功能，另外该区还有一核定位信号，是受体自核糖体上释放出来后定向地进入核内必需的肽段；E/F区前者为激素或配基结合区（hormone binding domain, HBD），后者起调节转录激活作用［4,5］　　ERα和ERβ由两个不同基因编码，它们的编码基因由相同数目的外显子组成，且ERα和ERβ DNA结合区的氨基酸序列基本一致，其同源性达96%，提示它们能与相似的靶基因反应元件结合。

在同样高度保守的配基结合区同源性则达58%［6］；而在HBD和位于氨基末端的反式激活功能区，ERα与ERβ间分别只有53%和30%的同源性［7］在A/B区和E区有两个与增强基因转录有关的活化功能区（activation function, AF），即AF1和AF2，其中ERβ的AF1功能微弱，而两者的AF2相似，说明它们在转录水平对不同的雌激素反应性基因作用不同，即转录基因需要AF1和AF2时，ERα的功能较ERβ强，在不需要AF1时两种ER的功能相当两种ER的配体结合特性相似，但 ERβ对雌二醇的亲和力较ERα低，提示很可能在循环雌激素水平升高时ERβ才能被激活［8,9］总　　之，ERα与ERβ在结构上和功能上有一些共同的特性，也有显著不同的特点它们与雌激素具有相似的亲和力，但其依赖配体和反应元件的信号作用是不同的［10］，因此在基因调节方面二者分别扮演不同的角色　　1.2ERα与ERβ的分布 ERα和ERβ在体内分布广泛，它们可共存亦可单独表达ERα、ERβ在两性生殖器官中均有广泛不均匀性分布，从阴道至输卵管的上皮中，ERα的表达逐渐减少，而ERβ的表达逐渐增多［11］在两种受体共存的器官中，ERα在子宫和附睾内占优势，而ERβ则在卵巢、睾丸、前列腺中占优势。

乳腺组织中两种ER均可表达，但尚未发现两种亚型的分布有明显的差别在端脑、下丘脑、垂体和脊髓内均有ERα和ERβ表达，ERβ在室旁核、视上核、海马区等部位均有较高表达，而ERα的表达低或无表达有报道发现人下丘脑内ER亚型的表达与性别、年龄相关，女性下丘脑内的ER亚型表达高于男性；青春期前ERβ占优势而成年后ERα占优势［12］　　消化系统中可检测出两种ER，肝脏以ERα为主，消化道黏膜上皮以ERβ为主在骨骼、心脏中α型与β型表达相仿，而在人胚胎肾、脾、肾上腺、肺中ERβ表达多于ERα在人甲状腺、角膜、内耳、脂肪内亦有ER表达　　1.3ER的作用机制 ERα和配基结合后，导致原结合于受体上的热休克蛋白90从受体上解离，结合了配体的雌激素受体发生构象改变并同型二聚体化，这种同型二聚体复合物与靶基因上雌激素反应元件具有高度亲和能力（雌激素反应元件为位于5’端雌激素诱导基因调节域的特异DNA序列）当这种亲合发生时，同型二聚体复合物将使其它相关因子聚集到靶基因启动子上并促发基因转录，继而mRNA翻译成蛋白质并表现出各种生理效应ERβ与配体结合后，通过靶基因上的AP1反应元件以与ERα相反的介导模式影响ER介导的靶基因转录活性，如17β雌二醇和ERα结合通过靶基因上的AP1反应元件激活并提高报告基因的转录，然而和ERβ结合则抑制其转录［3,13~17］。

　 　2植物雌激素 　　植物雌激素是植物中具有弱雌激素作用的化合物其通过与甾体雌激素受体以低亲和度结合而发挥弱的雌激素样效应自1946年首次报道植物雌激素以来，至今已发现具有雌激素活性的植物达几百种之多　　体外实验证实，植物雌激素是一类生物活性较弱的雌激素，它们与哺乳动物的ER的结合能力很低，且不同植物雌激素与ER结合的亲和力也不同拟雌内酯的亲和力最大，比雌二醇的亲和力低10～20倍；其次是染料木黄酮，约低100倍；而黄豆苷原和雌马醇等，至少低1 000倍不同的植物雌激素与ERα和ERβ的亲和力并不完全相同，拟雌内酯、芹黄素、4’;5;7三羟基黄酮和柑桔苷元对ERβ的亲和力比ERα高，香豆雌酚、金雀异黄酮和黄豆苷元与ERβ的亲和力高于ERα，分别是ERα（主要存在于子宫和乳腺等）的7、22和5倍［18,19］　　植物雌激素可视为人类和其他哺乳动物的外源性激素，直接参与机体的内分泌调节一方面，一定剂量的植物雌激素在体内能够与ER结合，发挥雌激素样作用Peterson等［20］报道，植物雌激素中剂量时，可以产生一定的雌激素活性；高剂量时，可以活化因雌激素水平限制未能活化的ER，产生雌激素强效应；当植物雌激素使用足够的剂量时，可以产生与体内17β雌二醇相似的效能。

研究发现，食物中的植物雌激素在防治更年期综合征、绝经后骨质疏松症等方面有类似雌激素替代疗法的积极作用［21］一些异黄酮在内源性雌激素相对缺少时具有雌激素效应，可以作为子宫切除后的代用品欧洲已经人工合成了雌激素代用品ipriflavone作为骨质疏松的治疗药物，其代谢产物之一为黄豆苷元另一方面，低剂量的植物雌激素和内源性雌激素竞争性地与ER结合形成ER复合物，占据了受体结合部位，阻止了体内雌激素分子与受体相结合，因而有效地减弱了靶细胞对雌激素的应答，而起到了抗雌激素作用染料木黄酮活性不足雌激素的千分之一，它与乳腺细胞的ER结合，竞争性占据ER位置，阻断雌激素的作用异黄酮与ER结合后，刺激性激素结合球蛋白的产生，并抑制酪氨酸酶和雌激素合成酶的活性，从而减轻雌激素的促细胞增殖的作用雌激素通过刺激细胞增生诱发癌症，植物雌激素能够通过雌激素拮抗作用减少乳腺癌和子宫癌的发生Adlercreutz的研究表明，植物雌激素对乳腺癌、前列腺癌和结肠癌都有预防作用，这是因为植物雌激素与雌二醇竞争结合ER，从而抑制了雌二醇对肿瘤细胞的促分裂作用，抑制了肿瘤细胞的生长［22］植物雌激素还有抗氧化的作用，而自由基被认为与体内肿瘤的形成有关。

　　此外，植物雌激素对心血管系统具有良好的保护作用如异黄酮与ER结合后，可以降低体内胆固醇的含量，减少心血管疾病如高胆固醇血症、动脉硬化病变等的发生［23］　　植物雌激素具有雌激素激动剂和阻断剂效应，对于妇女绝经后因雌激素减少引起的一些疾病以及激素相关疾病有较好的预防和治疗作用植物雌激素也有不利的一面，它会改变妇女的月经周期，大剂量的植物雌激素对于人的生育和发育都有不良影响因此，我们尚需进行深入细致的探讨，进行更多的临床研究，以便 科学 合理地开发和利用植物雌激素　 　［ 参考 文献 ］ 　　1Rose VL. AAP issues recommendations for the use of soy proteinbased formulas in infant feeding［J］. Am Fam Physician, 1998, 57(11): 2876.　　2Green S, Walter P, Kumar V, et al. Human oestrogen receptor cDNA: Sequence, expression and homology to verb A［J］. Nature, 1986, 320(6058): 134139. 　　3Kuiper GG, Enmark E, PeltoHuikko M., et al. Cloning of a novel receptor expressed in rat prostate and ovary［J］. Proc Natl Acad Sci U S A, 1996, 93(12): 59255930.　　4Pace P, Taylor J, Suntharalingam S, et al. Human estrogen receptor beta binds DNA in a manner similar to and dimerizes with estrogen receptor alpha［J］. J Biol Chem, 1997, 272(41): 2583225838.　　5Ogawa S, Inoue S, Watanabe T, et al. The complete primary structure of human estrogen receptor beta (hERbeta) and its heterodimerization with ER alpha in vivo and in vitro［J］. Biochem Biophys Res Commun, 1998, 243(1): 122126.　　6Tremblay GB, Tremblay A, Copeland NG, et al. Cloning, chromosomal localization, and functional analysis of the murine estrogen receptor beta［J］. Mol Endocrinol, 1997, 11(3): 353365.　　7李艳, 张平安. 雌激素受体β的研究进展［J］. 国外医学临床生物化学与检验学分册, 2002, 23(4): 214215.　　8Giguere V, Tremblay A, Tremblay GB. Estrogen receptor beta: reevaluation of estrogen and antiestrogen signaling［J］. Steroids, 1998, 63(56): 335339.　　9张吉强, 蔡文琴. 雌激素β受体研究进展［J］. 生理 科学 进展, 2001, 32(1): 6870.　　10张吉强, 姚青, 蔡文琴. 雌激素β受体免疫阳性物质在生后不同发育时期小鼠基底前脑的表达研究［J］. 第三军医大学学报, 2002, 24(8): 889891.　　11Mowa CN, Iwanaga T. Differential。