IPTG诱导表达蛋白步骤 .

1、IPTG诱导表达蛋白步骤15-11-3配固体培养基和液体培养基，灭菌。配BindingBuffer和脱盐液各500ml。在400ml体积时调节溶液pH值至7.4，定容后转到试剂瓶中。溶液使用前要抽滤（滤除溶液内的气泡和不溶性杂质）。倒板：（5个灭菌的培养皿）微波加热溶解固体培养基（每次加热30s待有沸腾的迹象时，减少加热的时间）。超净台操作，以11000的比例（1ml培养基1l抗生素）向培养基中加入Kan+(50mg/ml)，摇匀。倒板。培养皿放置在超净台上凝固，凝固后将培养皿倒着放入培养箱中15-11-4热转化：（将质粒导入大肠杆菌中）提前将大肠杆菌（冰上融化）和质粒拿出来融化，混合（冰上操作）后冰上放置30min。42热水浴1min（超过90s会损伤细菌），取出后立即放在冰上冷却23min，加入1mlSOC培养基。摇床上摇45min，150rp，37。（使菌体复苏）离心，3000rpm3min。涂板：取200l上述液体，喷到板上，用玻璃涂布棒涂匀，放入培养箱中30min晾干后倒着放置。（1216h）15-11-5配IPTG（0.2g/ml），用灭菌水，超净台操作。挑单克隆：将细菌放

2、入培养液中，以便进行扩大培养和后续实验）提前准备好几支装有3ml培养基的试管，每管加入3lKan+抗生素(50mg/ml)，塞好塞子，试管倾斜，是抗生素溶入培养液中。（塞子打开前和塞好后都要在酒精灯上过火灭菌）。小镊子过火灭菌后，夹取一个枪头，在培养皿上挑一个单个的菌落，轻轻划过。将带有菌落的枪头放入试管中，塞好塞子（试管中培养基液澄清）将试管放在摇床中培养一晚，37,250rpm。（尽量不超过12h）【试管中培养基液变混浊】注意：操作尽量在靠近酒精灯的地方进行。15-11-6扩大培养、诱导表达以（抗生素培养基）11000的比例向培养基中加入Kan+抗生素，摇匀后再加入（100ml培养基）1ml单克隆溶液，摇匀。摇床上放置2.5h,37,180rpm以48lIPTG/100ml培养基的比例加入IPTG诱导，移去牛皮纸，恒温摇床上摇6h，30,180rpm。冰上放置一晚（抑制细胞生长速率，有利于蛋白质充分折叠）15-11-6 离心收集细菌：将培养液倒入 50ml 离心管中， 8000rpm, 离心 5min ， 弃上清。沉淀加水冲洗混匀，再离心，弃上清。加 PBS 冲洗混匀， 离心，弃上清。加 PBS 混匀，将溶液移入 PU 管中， -20 保存。 15-11-7 破碎、离心细胞 4ml 细胞液用超声破碎 34 次（探头不能碰到管底和管壁，且 离管底 1cm 左右 ,47ml ） ，至溶液透明。 将溶液分装到 1.5ml 离心管中， （ 10000rpm ， 4 ,1015min ） 离心23 次至没有白色沉淀。 蛋白质纯化脱盐 离心后得到的上清液用针筒抽取过膜， 先后用镍柱纯化、 脱盐 柱脱盐（柱子不能干，不能有气泡） 。

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