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多糖的分离纯化.ppt

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  • 上传时间:2024-08-19
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    • 莼菜多糖的分离纯化莼菜多糖的分离纯化PPTPPT制作:丁楚蔚、汪心妍制作:丁楚蔚、汪心妍汇报人:丁楚蔚汇报人:丁楚蔚背景资料:谭晓菁、江淑华背景资料:谭晓菁、江淑华 研究背景实验步骤与结果总结与展望目录 研究背景1 莼菜莼菜•睡莲科,多年生水生草本植物,又名马蹄草,•有调节免疫、抗氧化、抗病毒、抗炎、抗菌、降血糖、￿￿￿降血脂等功效￿,•含酸性多糖、多酚、蛋白质、氨基酸、维生素、组胺及微量元素,•多糖在莼菜干品中所占的比例最高,主要分布于叶底部、茎周围的黏液质中,是莼菜发挥药效的主要物质基础 方法流程采用碱提醇沉工艺,经除蛋白、除色素得到莼菜多糖￿(BSP)再 经 DEAE纤维素DE-52柱Sepharose￿CL-6B琼 脂 糖凝胶柱对BSP进行分级精制采用高效凝胶过滤色谱￿(HPGFC)测定BSP各组分的分子量 仪器与材料￿￿￿￿￿￿￿仪器￿￿￿￿￿材料Agilent￿1200￿HPLC￿色谱仪AE240￿分析天平UV-2102PC￿紫外可见分光光度计￿￿FD-1C-55￿冻干机旋转蒸发仪超滤仪DZG-6020￿减压干燥箱￿莼菜嫩叶;无水乙醇;￿NaOH;盐酸;木瓜蛋白酶;聚酰胺树脂;￿DEAE￿纤维素￿DE-52;琼脂糖凝胶￿Sepharose￿CL-6B;￿透析袋;蒽酮、硫酸;纯化水 粗多糖的提取莼菜粗多糖￿￿￿￿￿￿￿加40倍￿0.￿3￿mol/L￿NaOH￿溶液,70￿℃￿加热搅拌提取￿2￿h,加盐酸中和,过滤,滤液浓缩,加入无水乙醇至￿67%￿,4￿℃静置过夜,4￿500￿r/min￿离心￿20￿min,80%￿乙醇洗涤￿3￿次,沉淀减压干燥,得￿83￿g￿莼菜粗多糖。

      除去脂溶性成分￿￿￿￿￿￿￿￿取250g莼菜喷干粉,加无水乙醇2.5￿L,60￿℃￿旋转回流提取2￿h,过滤,重复操作￿1￿次,除去脂溶性成分,滤渣烘干莼菜喷干粉￿￿￿￿￿￿￿新鲜莼菜嫩叶,经清水淋洗、均浆机剪切、喷雾干燥得莼菜喷干粉￿ 粗多糖纯化01020304酶解灭活脱蛋白￿￿￿粗多糖用￿2.5￿L￿纯化水复溶,加入木瓜蛋白酶,63￿℃￿酶解￿6￿h,灭活过滤除去不溶物,滤液进行第2￿次酶解灭活脱蛋白聚酰胺层析￿￿￿滤液流经预处理的聚酰胺层析柱脱色,滤液与聚酰胺湿填料的体积之比为1∶1,纯化水洗脱,共收集洗脱液￿8￿L滤膜过滤浓缩￿￿￿再用微孔滤膜过滤,滤液用超滤膜超滤浓缩至800mL￿后加入无水乙醇至67%,4￿ ℃￿ 静置过夜后离心,80%￿乙醇洗涤￿3￿次,减压干燥得到BSP￿￿￿￿获得灰白色胶状莼菜多糖￿(BSP)￿22￿g,收率为￿8.￿8%￿ BSP含有量测定010203葡萄糖标准曲线制作￿￿￿￿BSP纯度测定精密称取干燥至恒重的BSP￿24.72￿mg￿至￿500mL￿量瓶,纯化水溶解并定容,摇匀,测定样品吸光度为￿0.521,计算可知￿BSP的纯度为￿61.￿89%￿。

      ￿￿￿￿￿紫外检测粗多糖经木瓜蛋白酶脱蛋白、聚酰胺脱色素等处理后,紫外全波长扫描显示在￿260、280￿nm￿处其吸光度接近于零,表明已除去蛋白质、核酸等杂质利用蒽酮硫酸法:以葡萄糖质量浓度为横坐标￿(X),吸光度为纵坐标￿(A)得曲线方程￿A￿=￿17.￿294X￿-0.￿0076￿(R2￿=￿0.￿9994) BSP 精制取10￿g￿BSP,200￿mL￿纯化水充分溶解后过DEDA￿纤维素￿DE-52￿离子交换柱￿(60￿mm￿×￿950￿mm),依次用0~1.0mol/L￿NaCl￿溶液梯度洗脱,分管收集洗脱液,采用￿“2.￿2”￿项下方法,以洗脱管数为横坐标,多糖浓度为纵坐标绘制洗脱曲线BSP￿经￿DEAE￿纤维素￿DE-52￿分离后,可得￿3￿个峰￿(图￿1),透析￿(截留分子量￿8￿000￿~￿14￿000)、浓缩、冻干各峰组分,得到￿BSP-1、BSP-2、BSP-3 BSP 精制对￿2￿个主要组分￿BSP-1、BSP-3￿用琼脂糖凝胶柱￿Sepharose￿CL-6B￿进一步的分离纯化,用纯化水洗脱,蒽酮-硫酸显色法测定多糖含有量洗脱曲线￿(图￿2)￿表明,莼菜精制多糖￿BSP-1、BSP-3￿组分均一,分别浓缩、冻干￿。

      分子量测定￿￿￿￿￿￿￿￿色谱条件:￿色谱柱￿TSK￿gel￿G5000PWxl￿(￿10￿)、￿G4000PWxl￿(￿10￿)、G3000PWxl￿(7)￿(7.￿8￿mm￿×￿300￿mm)￿串联;￿保护柱￿TSKPWxl￿Guard￿column;￿Agilent￿1260￿示差折光检测器;￿流动相为纯化水;￿体积流量0.￿4￿mL/min;￿进样量￿30μL;￿柱￿温30￿℃￿;￿检测器温度￿35￿℃￿;￿环境温度￿25￿℃￿￿￿￿￿￿￿￿￿￿￿￿￿￿称取葡聚糖对照品、莼菜多糖各组分样品(BSP1、BSP2、BSP3),分别用纯水溶解并配制成2mg/mL的溶液,过￿0.￿22￿μm微孔滤膜,取续滤液,将图谱数据导入￿GPC软件,建立分子量分布标准曲线,得到分子量对数￿log￿MW与洗脱体积￿VR的线性回归方程￿log￿MW￿=￿10.￿513￿-￿0.￿2377VR(r￿=￿0.￿996￿2),￿￿￿￿￿￿ ￿￿￿将莼菜多糖各组分导入￿GPC￿软件,调用标准曲线,得出莼菜多糖各组分的Mw、Mn￿和￿D￿等,￿￿结果见表￿1,莼菜多糖的分子量分布为￿(1.￿0507￿~￿1.￿5208)￿×￿106￿Da,分子量较大。

      ￿￿￿￿图￿3￿显示,高效凝胶渗透色谱图出峰时间单一,可知莼菜多糖各组分均一性良好 感谢在座各位聆听感谢在座各位聆听 。

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